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北大魏文勝組報道新型RNA單堿基基因編輯技術(shù)LEAPER

發(fā)布日期:2019/7/16瀏覽次數(shù):1213

2019年7月16日,北京大學(xué)魏文勝課題組以長文形式在Nature Biotechnology雜志在線發(fā)表了題為Programmable RNA editing byrecruiting endogenous ADAR using engineered RNAs的研究論文,首次報道了名為LEAPER的新型RNA 單堿基編輯技術(shù)。與傳統(tǒng)的核酸編輯技術(shù)需要向細胞同時遞送編輯酶(如Cas蛋白)及向?qū)NA不同,LEAPER系統(tǒng)僅需要在細胞中表達向?qū)NA即可招募細胞內(nèi)源脫氨酶實現(xiàn)靶向目標RNA的編輯。利用該技術(shù),研究人員在一系列疾病相關(guān)基因轉(zhuǎn)錄本中實現(xiàn)了高效、精準的編輯,并成功修復(fù)了來源于Hurler綜合征病人的α-L-艾杜糖醛酸酶缺陷細胞。該技術(shù)的建立為生命科學(xué)基礎(chǔ)研究和疾病治療提供了一種全新的工具。


北大魏文勝組報道新型RNA單堿基基因編輯技術(shù)LEAPER


魏文勝課題組在研究中首次發(fā)現(xiàn),只需轉(zhuǎn)入一條特殊設(shè)計的RNA (arRNA, ADAR-recruiting RNA),就能夠通過招募細胞內(nèi)源的ADAR1 蛋白對靶向基因轉(zhuǎn)錄本上特定的腺苷產(chǎn)生高效精準的編輯,并不需要引入任何外源效應(yīng)蛋白。ADAR1基因敲除與回補實驗和高通量測序分析表明,細胞內(nèi)源的ADAR1 蛋白介導(dǎo)了這一過程。這種新型RNA編輯技術(shù)被命名為LEAPER (Leveraging Endogenous ADAR for Programmable Editing on RNA)。


深入研究表明LEAPER具有廣泛的適用性,能對RNA分子上絕大多數(shù)的腺苷酸位點進行精準編輯。在人的原代細胞-包括肺成纖維細胞、支氣管上皮細胞及T細胞中,LEAPER的編輯效率最高可達80%,顯示出該技術(shù)在疾病治療中巨大的應(yīng)用前景。在諸多應(yīng)用嘗試中,LEAPER的高效、精準的特性得到充分驗證。比如LEAPER可以通過修復(fù)抑癌基因TP53中的致病突變來恢復(fù)p53突變體的轉(zhuǎn)錄調(diào)節(jié)功能。此外,在Hurler綜合征患者來源的原代細胞中,LEAPER能夠成功修復(fù)致病突變,并恢復(fù)細胞中的α-L-艾杜糖醛酸酶的催化活性。


北大魏文勝組報道新型RNA單堿基基因編輯技術(shù)LEAPER


近期的研究表明,DNA單堿基編輯技術(shù),包括胞嘧啶堿基編輯器和腺嘌呤堿基編輯器在RNA或DNA水平上產(chǎn)生了嚴重的脫靶現(xiàn)象,引發(fā)人們對其安全性的擔(dān)憂。利用RNA-Seq技術(shù)在轉(zhuǎn)錄組水平對LEAPER技術(shù)進行的評估,沒有觀測到明顯的脫靶現(xiàn)象,顯示了新技術(shù)的高度特異性。另外,LEAPER不影響內(nèi)源ADAR蛋白的正常功能,也不會激活細胞中的天然免疫反應(yīng),表明其是一類安全的基因編輯工具。


與RNAi類似,LEAPER充分利用了細胞中天然存在的機制:僅用一條RNA 就實現(xiàn)了精確高效的RNA單堿基編輯,從而避免了任何由于表達外源效應(yīng)蛋白而引起的各種潛在問題。這種新型的基因編輯技術(shù)在科學(xué)研究和疾病治療中顯示出可觀的優(yōu)勢與潛能,同時也為發(fā)展基于細胞內(nèi)源機制的基因編輯技術(shù)指明了方向。近期,Thorsten Stafforst課題組報道了命名為RESTORE(recruiting endogenous ADAR to specific transcripts foroligonucleotide-mediated RNA editing) 的RNA編輯方法。與LEAPER類似,RESTORE也能夠利用內(nèi)源ADAR進行靶向RNA的精準編輯;不同之處在于,RESTORE中的向?qū)NA是一段化學(xué)合成的寡核苷酸,為保持其穩(wěn)定性,需要進行大量化學(xué)修飾。而LEAPER可以通過穩(wěn)定表達的方式在細胞內(nèi)發(fā)揮作用,因此適用于裝載至腺相關(guān)病毒 (AAV)、慢病毒等載體中,在遞送至機體后持續(xù)發(fā)揮功能。


北大魏文勝組報道新型RNA單堿基基因編輯技術(shù)LEAPER


研究背景


近年來,以CRISPR/Cas9為代表的基因組編輯技術(shù)在生物醫(yī)學(xué)等諸多領(lǐng)域產(chǎn)生了深遠的影響,但該技術(shù)目前存在的一系列問題使其在臨床治療應(yīng)用中遭遇瓶頸。問題的根源之一在于當前的基因編輯體系依賴于外源編輯酶或效應(yīng)蛋白的表達,從而造成:(1) 蛋白分子量過大使得通過病毒載體進行裝載及人體內(nèi)遞送十分困難;(2) 由蛋白過表達引起的DNA/RNA水平的脫靶效應(yīng);(3) 由外源蛋白表達引起的機體免疫反應(yīng)及損傷;(4) 機體內(nèi)的預(yù)存抗體使外源編輯酶或效應(yīng)蛋白被中和從而導(dǎo)致基因編輯失敗等。為解決上述問題,亟需建立新型基因編輯工具,特別是擺脫傳統(tǒng)技術(shù)依賴于外源蛋白表達的桎梏。


ADAR(Adenosine deaminase acting on RNA) 是一類在人體內(nèi)各組織中廣泛表達的腺苷脫氨酶,能夠催化RNA分子中腺苷A→肌苷I(鳥苷G)的轉(zhuǎn)換。相比DNA編輯,RNA編輯不需要對基因組序列進行永久性改變,這種可逆的、易于調(diào)控的編輯方式在安全性上可能更具優(yōu)勢。麻省理工學(xué)院張鋒課題組曾報道,過表達Cas13-ADAR融合蛋白及向?qū)NA可以實現(xiàn)靶向目標RNA的精準編輯,但是該方法無法解決外源蛋白表達造成的問題。




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